celulas
microoganismos
hongos
levaduras
Enzima
Crecimiento celular
donde: x= concentracion celular(mg cm-3)
t= tiempo de incubacion (h)
u= velocidad de crecimiento especifico(1/h)
a= velocidad especifica de lisis o de metabolisis endogeno(1/h)
SISTEMAS DE FERMENTACION
la fermentación puede llevarse a cabo mediante procesos discontinuos, discontinuos alimentados a intervalos o continuos, a por variación de estos procesos. Los cultivos discontinuos pueden considerarse como un sistema cerrado, excepto por la aireación, que contiene una cantidad limitada de medio, en el que inoculado pasa a través de un número de fases.
En el proceso discontinuo todo el sustrato se añade al comienzo de la fermentación, en los procesos discontinuos el sustrato se añade a intervalos a lo largo del proceso.
Lo sistemas discontinuos alimentados a intervalos o continuos, se utilizan en la mayoría de los procesos de fermentación industriales; la principal desventaja de de las fermentaciones discontinuas cuando se utilizan para la producción de productos asociados al crecimiento, es que la formación eficiente del producto tiene lugar durante una fracción del ciclo de fermentación.
Los sistemas continuos con volúmenes de salida de productos elevados pueden ser, en consecuencia, mucho mas eficaces en determinadas aplicaciones en términos de productividad del fermentador (volumen de producción por unidad de volumen por unidad de tiempo, kgm-3 h-1). Las fermentaciones continuas pueden considerarse como un sistema abierto en que el medio se va añadiendo continuamente al biorreactor y se va eliminando simultáneamente igual volumen de medio fermentado. Existen dos tipos principales de reactores continuos, los reactores de mezcla completa y los de flujo pistón.
En un cultivo discontinuo, la concentración de biomasa por unidad de tiempo ( t ) es :
x-XR=Y(SR-s)
Donde x= concentración celular en el tiempo t
XR =inoculo o concentración celular inicial
Y=rendimiento para el substrato limitante ( g de biomasa por g de substrato consumido)
s=concentración de substrato en el tiempo t
SR=concentración inicial del medio
Por tanto
Y=x-XR/SR-s
La cantidad de biomasa alcanzada en la fase estacionaria depende teóricamente de la concentración inicial del substrato limitante del crecimiento y de la eficacia del organismo para convertir el substrato en materia celular. Por tanto suponiendo que el substrato limitante del crecimiento sea S = 0 en la fase estacionaria
Y=x-XR/SR
En un reactor continuo de mezcla completa en una sola etapa, la adición de substrato a una velocidad adecuada combinada con la eliminación a una velocidad volumétrica igual de medio de cultivo del recipiente produce un estado estacionario en el que la formación de biomasa esta en equilibrio con la perdida de células. en estas condiciones :
(a) La velocidad de crecimiento especifico (u)viene controlada por la velocidad de dilución (D) puesto que u = D
(b) La concentración de substrato en estado estacionario , /s en quimostrato viene determinada por la velocidad de dilución , según la ecuación :
/s=KsD/umax -D
Si las cinéticas siguen en el modelo de monod y D (C) La concentración de biomasa en el estado estacionario , /x viene determinada por las variables operacionales SR y D , según la ecuación :
/x=Y[SR- KsD/umax-D]
DISEÑO DEL FERMENTADOR
la función principal de un fermentador es la de proporcionar un medio ambiente controlado que permita el crecimiento eficaz de las células y la formación del producto. El fermentador típico moderno de laboratorio se ha diseñado como una unidad sofisticada con las características y la instrumentación necesarias para llevar a cabo una gran variedad de procesos de fermentación, a la hora de discutir de los fermentadores piloto, están hechos específicamente para unos procesos y lograr una mayor eficacia, en consecuencia tiene características especificas para un proceso de producción en particular.
Condiciones para operar en medio aséptico
muchos biorreactores tiene que trabajar en condiciones asépticas utilizando un inoculo puro del microorganismo y excluyendo los organismos contaminantes; por consiguiente, el biorreactor, al igual que la red de tuberías asociadas, ha sido diseñado como un recipiente a presión de tal forma que tanto el sistema como el medio que contenga puede esterilizarse a la temperatura /presión adecuadas, un mínimo de
121° C/15 así durante 15-30 minutos. Las válvulas utilizadas en las secciones esterilizables deben ser utilizadas en condiciones asépticas. Las válvulas de estrangulamiento y las de diafragma son particularmente adecuadas, puesto que su mecanismo de operación esta separado del medio líquido o gaseoso por un tubo o un diafragma flexible. Los puntos de entrada al recipiente y el proceso para añadir y eliminar gases o líquidos al/del reactor durante la fermentación también deben estar diseñados de forma que mantengan las condiciones asépticas.
No todos los procesos de fermentación necesitan condiciones totalmente estériles; en algunos se reduce simplemente su contaminación por pasterización, mientras que otros dependen realmente de la población microbiana natural, por lo que el diseño del reactor y del equipo necesarios para cada proceso deben simplificarse de acuerdo con esto.
%Determinación de la acidez total de un vinagre.
“líquido obtenido de la fermentación acética del vino puro o diluído o de piquetas de vino, con una riqueza mínima de 50 grados de ácido acético por litro”.
La acidez total se define como la totalidad de los ácidos volátiles y fijos que contiene el vinagre, expresada en gramos de ácido acético por 100 mL de vinagre. Para determinar la acidez de un vinagre hemos de obtener la proporción equivalente de ácido acético.
la norma española establece que los vinagres comerciales tengan, por lo menos, una concentracion de 5 % en peso de ácido acético. El peso molecular del ácido acético es 60.053, esto equivale a afirmar que las disoluciones comercializadas como vinagre deben tener una concentración
Determinaremos la concentración de ácido acético en una solución de acido acético por valoración con una disolución de hidróxido sódico, previamente valorada. Es decir, calcularemos la molaridad en ácido acético de distintas muestras de vinagre, a partir de la ecuación ácido-base ajustada:
CH3COOH + NaOH <--> CH3COO- + H2O + Na+
.
1 mol de ácido acético (AcH) reacciona con 1 mol de hidróxido sódico (NaOH).
MHAc VHAc = MNaOH VNaOH
Relación peso/volumen
g de HAc = (nº de moles de HAc) MHAc = MNaOH..VNaOH.60.053.
El porcentaje de ácido acético en el vinagre (p/v)
ml de vinagre ml vinagre
Materiales.
Balanza analítica.
Bureta.
Pipetas aforadas de 10 mL.
Matraces erlenmeyer de 250 mL.
Probeta de 100 mL.
Vasos de precipitados de 50 y de 400 mL.
Reactivos y disoluciones.
Indicador fenolftaleína
Disolución valorada de hidróxido sódico.
Calculos
Preparación NaOH
0.5 mol NaOH * 100 ml sln * 39.97g NaOH * 0.98 = 1.95g NaOH
1000 ml sln 1 mol NaOH
Se nesecitan 1.95g de NaOH concentrado al 98% para preparar una solucion
Preparación CH3COOH (acido acetico) a partir de una concentración de 96%
RESULTADOS
se hallaron los siguientes ph a las siguientes sustancias:
NaOH ph = 10
HCl ph = 1
CH3 COOH ph = 3
.
Rodrigo galindo Rodrigo gutierrez Miguel castillo Luis gonzales